为了正确应用免疫细胞化学标记手段在恶性淋巴瘤诊断，分型等方面发挥更大的作用应注意下列问题：①免疫细胞化学在恶性淋巴瘤分析中应紧密结合组织学改变，有目的地选用高效、广谱的抗体，淋巴瘤常用标记抗体见表12-4。因为免疫细胞化学的结果受到多种因素的影响，可以出现假阳性或假阴性；②为了避免因抗体标记的局限性而造成漏诊，有条件的单位最好一次用同功能的几种抗体，这样可以起来抗体间的反应互补性，往往比单项抗体的标记率高；③标本固定要及时，应用中性福尔马林液或B5固定液，则抗原保存要好一些。尽可能应用低压，低温（60℃以下）浸蜡，减少抗原的破坏丢失；④抗体的浓度要适当，消除背景染色。加用二甲砷酸钠可除去背景着色。特别膜标记阳性时与背景着色很难区分。前者包绕细胞呈环状；⑤每次染色应有阳性对照和阴性对照；⑥目前淋巴瘤的基因重排检测技术已经建立。特别是多聚酶链反应（PCR）扩增技术的应用，提供了特异（无假阳性），敏感（可检测出1/100万瘤细胞）快速（当天可出报告）的淋巴瘤检测手段。作者科室已建立了该项技术。虽然其设备条件要求比较高。可作为疑难、早期、化疗后残留病灶病例的确诊。
表12-4 淋巴瘤常用标记抗体
| CD | 常用名称 | 抗原 | |
| 分子量（kD） | 反应细胞 | ||
| CD1 | T6，OKT6，Leu6 | 45 | 胸腺细胞/Langerhans细胞 |
| CD2 | T11，OKT11，Leu5 | 50 | 全T（E花结受体） |
| CD3 | T3，OKT3，Leu4 | 19～29 | 全T（T受体相关） |
| CD4 | T4，OKT4，Leu3 | 55 | T辅助（NHc II类） |
| CD5 | T1，OKT4，Leu1 | 67 | 全T，偶B |
| CD6 | T12，TU33 | 120 | 全T，偶B |
| CD7 | CDLeu9，TU14，EA1※ | 41 | 全T |
| CD8 | T8，OKT8，Leu2 | 32 | T抑制（TMHc I类） |
| CD9 | J2，BA2 | 24 | T，B，髓细胞 |
| CD10 | J5，BA3，ViLA1 | 100 | 前，B前，生发中心（CALLA） |
| CD11 | MO1,E11,MY8 | 94～155 | 髓细胞，单核细胞 |
| CD13 | MY7(MCS—2 ) | 160 | 髓细胞，单核细胞 |
| CD14 | Mo2,MY4,UCHM1 | 55 | 髓细胞，单核细胞 |
| CD15 | LeuM1※,,anti X-Hapten | - | 粒细胞，单核细胞，R-S细胞，上皮细胞 |
| CD19 | B4 | 95 | 全B（不包括浆细胞） |
| CD20 | B1 | 35 | 全B（不包括浆细胞） |
| CD21 | B2 | 145 | 生发中心，套区和周围血B滤泡树突细胞 |
| CD22 | Leu14(To15),SHCL1 | 135 | 全B |
| CD23 | TU1,Blast2 | 45 | 套区，？生发中心B，不包括周围血 |
| CD24 | BA1 | 45，55，65 | 全B，粒细胞，浆细胞 |
| CD25 | TAC | 55 | 活化T和B（IL2受体） |
| CD30 | Ki—1 | 90～110 | R-S细胞，活化T和B |
| CD33 | MX9 | 67 | 髓细胞，单核细胞 |
| CD34 | MY10,3C5 | 115 | 成髓细胞 |
| CD45 | LCA※,T29/33, PD7/26 | 220 | 白血细胞共同抗原（T，B，M） |
| CD45R | UCHL1※ | 全T | |
| X4KB5※ | 全B | ||
| - | TdT※ | - | 前B和前T，皮质胸腺细胞 |
| - | L26※ | 全B | |
| - | HLA—DR (Ia-Like) | - | 全B（不包括浆细胞）活化T（MHc II 类） |
※可用石蜡切片标记的McAb
